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Un autre test réalisé sur prélèvement de sang, le dosage de l'interféron gamma (IFN), a été développé en Australie dans les années 1980, pour le dépistage de la tuberculose bovine en association avec l'IDS au pli sous‐caudal (Wood et al., 1991; Wood et Rothel, 1994; Wood et Jones, 2001). Il permet de détecter la libération d'interféron gamma dans une culture de sang total stimulé par de la tuberculine (Rothel et al., 1990). L'interféron gamma est une cytokine produite majoritairement par les lymphocytes T en réponse à une stimulation antigénique, notamment lors d'une infection par les mycobactéries (Pollock & Neill, 2002). Le principe du test de dosage de l'interféron gamma est décrit en Annexe 18. Ce test a été approuvé comme méthode officielle de diagnostic de la tuberculose bovine par les autorités australiennes en 1991 et en Nouvelle‐Zélande à la fin des années 1990 (Wood et Rothel, 1994; Cousins et al., 1998). Haute Autorité de Santé - Test de détection de la production d’IFNg (interféron gamma) pour le diagnostic des infections tuberculeuses. Il est à l'heure actuelle en cours de validation dans plusieurs pays européens (Allemagne, Belgique, Espagne, France, Grande‐Bretagne, Hongrie, Irlande, Pays‐Bas, Pologne).

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Une recrudescence du nombre de foyers de tuberculose bovine a été observée ces dernières années dans trois zones géographiques françaises (Côte d'Or, Dordogne, Camargue). Les difficultés liées à la réalisation et/ou à l'interprétation des résultats d'intradermotuberculination allant croissant dans ces zones, les autorités ont mis en place un protocole de dépistage expérimental incluant un nouveau test en cours de validation, le dosage de l'interféron gamma. Nouveaux outils du diagnostic de l’infection tuberculeuse latente - ScienceDirect. Ce dispositif a permis de relancer le dépistage de la tuberculose bovine dans les zones concernées, en améliorant la motivation des acteurs locaux. Afin d'encadrer au mieux l'utilisation de l'IFN sur le terrain, des « arbres décisionnels » ont été appliqués dans les départements à risque à des fins expérimentales. Ces protocoles prévoyaient l'utilisation de l'IFN en première intention en Camargue, pour le dépistage systématique annuel de l'intégralité des troupeaux. En Côte d'Or et en Dordogne en revanche, l'IFN était utilisé en série après une intradermotuberculination non négative, pour confirmer ou infirmer le résultat d'ID.

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Spécificité..................................................................................................................................... 17 II. L'interprétation de l'IDR.................................................................................................................... 18 II. IDR et infection tuberculeuse récente.......................................................................................... tuberculose-infection latente chez l'adulte........................................................................ 19 IDR et II. et tuberculose-infection latente chez l'enfant........................................................................ Dosage de l ifn gamma pour diagnostic infections tuberculeuses l. 19 IDR II. IDR et vaccination BCG............................................................................................................... 20 II. 6. Indications de l'IDR.......................................................................................................................... Les tests de détection de l'IFN Χ............................................................................. 21 II.

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Les antigènes, les méthodes de test et les critères d'interprétation desas diffèrent (Voir tableau 1)., Table1: différences dans Lesas actuellement disponibles Table1: différences dans les I actuellement disponibles QFT-GIT t-Spot processus initial traiter le sang total dans les 16 heures traiter les cellules mononucléaires du sang périphérique (PBMC) dans les 8 heures, ou si T-cell Xtend® est utilisé, dans les 30 heures m., tuberculosis Antigen Single mixture of synthetic peptides representing ESAT-6, CFP-10 & TB7. 7. Separate mixtures of synthetic peptides representing ESAT-6 & CFP-10 Measurement IFN-g concentration Number of IFN-g producing cells (spots) Possible Results Positive, negative, indeterminate Positive, negative, borderline, invalid What are the advantages of IGRAs?, Nécessite qu'une seule visite du patient pour effectuer le test. Dosage de l ifn gamma pour diagnostic infections tuberculeuses 2019. Les résultats peuvent être disponibles dans les 24 heures. n'augmente pas les réponses mesurées par les tests ultérieurs. La vaccination antérieure au BCG (bacille Calmette-Guérin) ne provoque pas de résultat de test IGRA faussement positif.

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Prélever un échantillon de sang sur le patient conformément aux instructions du fabricant du test. Prenez un rendez-vous de suivi pour que le patient reçoive les résultats du test. Sur la base des résultats des tests, fournir une évaluation de suivi et un traitement au besoin. Comment interprétez-vous les résultats des tests IGRA?, Les interprétations IGRA sont basées sur la quantité d'IFN-g qui est libérée ou sur le nombre de cellules qui libèrent de L'IFN-G. L'interprétation standard du test qualitatif (positif, négatif ou indéterminé) et les mesures quantitatives (concentrations nulles, TB et mitogènes ou dénombrements ponctuels) doivent être rapportées. comme pour les tests cutanés à la tuberculine (TST), Lesasas doivent être utilisés comme aide au diagnostic de L'infection par M. Dosage de l ifn gamma pour diagnostic infections tuberculeuses de la. Un résultat de test positif suggère que L'infection par M. tuberculosis est probable; un résultat négatif suggère que l'infection est peu probable., Un résultat indéterminé indique une probabilité incertaine d'infection par M.

Revue médicale suisse Médecine et Hygiène Chemin de la Mousse 46 1225 Chêne-Bourg Suisse Rédacteur en chef Bertrand Kiefer Tél. +41 22 702 93 36 E-mail: Rédacteur en chef adjoint Pierre-Alain Plan Secrétariat de rédaction / édition Chantal Lavanchy +41 22 702 93 20 Joanna Szymanski +41 22 702 93 37 Comité de rédaction Dr B. Kiefer, rédacteur en chef; Dr G. de Torrenté de la Jara, Pr A. Pécoud, Dr P. -A. Plan, rédacteurs en chef adjoints; M. Casselyn, M. Balavoine, rédacteurs. Secrétaire de rédaction Chantal Lavanchy: Conseil de rédaction Dr M. S. Aapro, Genolier (Oncologie); Pr A. -F. Allaz, Genève (Douleur); Dr S. Anchisi, Sion (Médecine interne générale); Pr J. -M. Utilité des tests sanguins interféron gamma dans le diagnostic de l’infection tuberculeuse chez l’enfant. Aubry, Genève (Psychiatrie); Pr C. Barazzone-Argiroffo, Genève (Pédiatrie); Pr J. Besson, Lausanne (Médecine des addictions); Pr F. Bianchi-Demicheli, Genève (Médecine sexuelle); Pr T. Bischoff, Lausanne (Médecine interne générale); Pr W. -H. Boehncke, Genève (Dermatologie); Pr.

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